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林可霉素快速檢測試劑盒說明書
更新時間:2020-11-13 點擊量:2668

林可霉素

快速檢測試劑盒說明書

一、原理

    試劑盒采用間接競爭ELISA方法,在微孔條上預(yù)包被偶聯(lián)抗原,樣本中的殘留物林可霉素藥物和微孔條上預(yù)包被的偶聯(lián)抗原競爭抗林可霉素藥物抗體,加入酶標記物后,用TMB底物顯色,樣本吸光值與其所含殘留林可霉素藥物的含量成負相關(guān),與標準曲線比較即可得出相應(yīng)殘留物林可霉素藥物的含量。

二、試劑盒特性

  • 試劑盒靈敏度:      0.1ppb
  • 孵育溫度:          25℃
  • 孵育時間:          30min~15min
  • 樣本檢測下限

組   織  ······································   0.4ppb

飼   料  ·······································   1ppb

蜂   蜜  ······································    2ppb

  • 交叉反應(yīng)率

林可霉素   ····································   100%

  • 樣本回收率

組   織  ······································  100±25%

飼   料  ·······································  95±25%

蜂   蜜  ······································  100±25%

三、試劑盒組成

1

微量測試孔

每條8孔,一板12條

2

標準液×6瓶

(1ml/瓶)

0ppb

0.1ppb

0.3ppb

0.9ppb

2.7ppb

8.1ppb

3

酶標記物

7ml

紅色帽

4

抗體工作液

7ml

藍色帽

5

底物A液

7ml

白色帽

6

底物B液

7ml

黑色帽

7

終止液

7ml

黃色帽

8

20X濃縮洗滌液

40ml

白色帽

9

20X濃縮提取

50ml

透明帽

四、所用儀器、試劑

具備的儀器微孔酶標儀、打印機、均質(zhì)器 、振蕩器、離心機、刻度移液管、天平(感量0.01g)

微量移液器:單道 20~200ul、單道100~1000ul、多道 250ul 

五、樣本前處理步驟

  • 樣本處理前須知

處理任何樣本時,都必須注意:

  •  本試劑盒所檢測的組織樣本包括:動物組織、禽類和水產(chǎn)組織。eg:雞、鴨、豬、牛、兔、魚、蝦等。
  •  實驗中必須使用一次性吸頭,在吸取不同的試劑時要更換吸頭。
  •  實驗之前須檢查各種實驗器具是否干凈,必要時可對實驗器具進行清潔,以避免污染干擾實驗結(jié)果。
  • 樣本前處理需配制:

配液1  樣本提取液:  

       將去離子水與20X濃縮提取液19:1稀釋。

  • 樣本前處理方法

(a)組織樣本(雞肉/肝、豬肉/肝、蝦、魚等)

1、稱2.0±0.05g 均質(zhì)的組織樣本于50ml離心管中;

2、加入6ml樣本提取液,振蕩2min,4000r/min以上,15℃離心10min;

3、取層50µl液體用于分析。

   樣本稀釋倍數(shù):4

(b)飼料樣本

1、稱1.0±0.05g 粉碎飼料樣本于50ml離心管中;

2、加入5ml樣本提取液,振蕩1min,4000r/min以上,15℃離心10min;

3、取200µl液體加入200µl樣本提取液,震蕩混勻,取50µl用于分析。

    樣本稀釋倍數(shù):10

(c)蜂蜜樣本

1、稱1.0±0.05g 蜂蜜樣本于50ml離心管中;

2、加入5ml樣本提取液,振蕩1min,4000r/min以上,15℃離心10min;

3、取200µl液體加入600µl樣本提取液,震蕩混勻,取50µl用于分析。

    樣本稀釋倍數(shù):20

六、 酶標免疫分析程序:

  • 測定前應(yīng)須知:
  • 使用前將需用試劑和板條的溫度回升至室溫(20-25℃)
  • 使用之后立即將所有試劑放回2-8℃。
  • 在ELISA分析中的再現(xiàn)性,很大程度上取決于洗板的一致性,正確的洗板操作是ELISA測定程序中的要點。
  • 所有恒溫孵育過程,避免光線照射,用蓋板膜蓋住微孔板。
  • 操作步驟:
  • 將試劑盒從冷藏環(huán)境中取出并將所需試劑從試劑盒取出,置室溫(20-25℃)平衡30min以上, 注意每種液體試劑使用前均須搖勻。
  • 按需要取出微孔條及板架,將不用的微孔板重新密封,保存于2-8℃,不要冷凍。
  • 配液:將40ml濃縮洗滌液(20倍濃縮)用去離子水按照1:19稀釋(1份濃縮洗滌液+19份去離子水),或按所需用量配制洗滌液。
  • 編號:將樣本和標準品對應(yīng)微孔按序編號,每個樣本和標準品均需做2孔平行,并記錄標準孔樣本孔所在的位置。
  • 加標準品/樣本50µl /孔,然后加酶標記物50μl/孔,再加入抗體工作液50µl/孔。輕輕振蕩混勻,用蓋板膜蓋板,25℃環(huán)境反應(yīng)30min。
  • 取出并甩干孔內(nèi)液體;用洗滌液按每孔250μl洗板4-5次,每次浸泡15-30秒,拍干(拍干后未被清除的氣泡可用干凈的槍頭刺破)。
  • 顯色:每孔加入底物液A液50µl再加B液50µl,輕輕振蕩混勻,25℃環(huán)境避光顯色15min。
  • 測定:加入終止液50µl,輕輕振蕩混勻,設(shè)定酶標儀于450nm處(建議用雙波長450/630nm檢測,在5min內(nèi)讀完數(shù)據(jù)),測定吸光度值(OD值)。

七、結(jié)果判定

結(jié)果判定有兩種方法,粗略判定可用第1種方法,定量判定用第2種方法。注意樣本吸光度值與其所含林可霉素藥物量成負相關(guān)。

1、粗略判定:

    用樣本的平均吸光度值與標準品比較即可得出其濃度范圍(ng/ml)。假設(shè)樣本1的吸光度值為0.238, 樣本2的吸光度值為0.946,標準液吸光度值分別是:0ppb1.8450.1ppb1.542;0.3ppb1.130; 0.9ppb0.635;2.7ppb0.326; 8.1ppb0.156。則樣本1的濃度范圍是2.7ppb - 8.1ppb;樣本2的濃度范圍是0.3ppb - 0.9ppb。乘以其對應(yīng)的稀釋倍數(shù)即為樣本中林可霉素藥物的實際濃度。

2、定量分析

(1)百分吸光率的計算,標準品或樣本的百分吸光率等于標準品或樣本的吸光度值的平均值(雙孔)除以第--個標準(0標準)的吸光度值,再乘以100%,即

百分吸光%)=

B

×100%

B0

B—標準溶液或樣本溶液的平均吸光度值

B0—0ng/L標準溶液的平均吸光度值

(2)標準曲線的繪制與計算

    以標準品百分吸光率為縱坐標,以林可霉素標準品濃度(ng/ml)的半對數(shù)為橫坐標,繪制標準曲線圖。將樣本的百分吸光率代入標準曲線中,從標準曲線上讀出樣本所對應(yīng)的濃度,乘以其對應(yīng)的稀釋倍數(shù)即為樣本中林可霉素藥物實際濃度。

若利用試劑盒專業(yè)分析軟件進行計算,更便于大量樣本的準確、快速分析。

八、 注意事項

  • 室溫低于25℃或試劑及標本未回到室溫(20-25℃)會導(dǎo)致所有標準的OD值偏低。
  • 在洗板過程中如果出現(xiàn)板孔干燥的情況,則會伴隨著標準曲線不成線性,重復(fù)性不好的現(xiàn)象。所以洗板拍干后應(yīng)立即進行下一步操作。
  • 混合要均勻,否則會出現(xiàn)重復(fù)性不好的現(xiàn)象。
  • 反應(yīng)終止液為2M硫酸,避免接觸皮膚。
  • 不要使用過了有效日期的試劑盒;稀釋或攙雜使用會引起靈敏度、OD值變化;不要交換使用不同批號的盒中試劑。
  • 不用的微孔板放進自封袋重新密封;標準物質(zhì)和無色的發(fā)色劑對光敏感,因此要避免直接暴露在光線下。
  • 顯色液若有任何顏色表明變質(zhì),應(yīng)當棄之。標準品1的吸光度值小于0.5時,表示試劑可能變質(zhì)。
  • 若樣本處理方法中檢測濃度不在曲線范圍內(nèi)時,可將樣本稀釋一定倍數(shù),使其可檢測范圍在曲線范圍內(nèi)時檢測。
  • 該試劑盒J反應(yīng)溫度為25℃,溫度過高或過低將導(dǎo)致檢測吸光度值和靈敏度發(fā)生變化。

九、儲藏條件和保質(zhì)期

  • 儲藏條件:試劑盒于2-8℃保存,不要冷凍。
  • 保 質(zhì) 期:該產(chǎn)品有效期為1年,生產(chǎn)日期見包裝盒。

提示:酶標板真空包裝袋若有漏氣,酶標板仍然正常有效,不影響實驗結(jié)果,請放心使用。

 

 

動物疾病類檢測產(chǎn)品

食品安全檢測試劑

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